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“线粒体内膜的暴露引发细胞凋亡线粒体自噬”的研究论文于2024 年 2 月 23 日在Nature在线发表。
在内源性途径引导的细胞凋亡过程中,BAX/BAK激活了线粒体的透化,导致细胞色素c释放。接着,线粒体网络发生剧烈的重塑,导致线粒体膨胀并释放促炎线粒体成分。
研究发现,在这一过程中,线粒体膨胀并暴露出线粒体内膜(IMM),触发了一种特殊形式的线粒体自噬,将这些受损的细胞器传递到溶酶体。这种IMM诱导的线粒体自噬与典型的PINK1/Parkin信号传导独立发生,并受到IMM的泛素化驱动。
研究数据表明,IMM诱导的线粒体自噬是细胞另一个安全机制,可以用来抑制受损的线粒体。在Caspase激活不完全或受抑制的情况下,以及PINK1/Parkin线粒体自噬功能受损或不足的情况下,这种机制可能具有特别重要性。
01介绍
线粒体是膜结合细胞器,对于所有真核生物的 ATP 生产至关重要。自从十亿多年前与较大的宿主细胞建立了关键的内共生关系以来,线粒体已成为细胞信号传导的枢纽。健康的线粒体网络是通过生物发生(新线粒体的形成)、动力学(裂变和融合)、线粒体修复(例如线粒体未折叠蛋白反应)和线粒体降解途径(包括但不限于线粒体自噬)之间的协调平衡来维持的。),统称为线粒体质量控制。这种质量控制很重要,不仅对于维持健康、功能性的线粒体网络 ,而且对于防止与分子模式 (DAMP) 信号传导相关的不必要的损伤。无法修复的受损线粒体将被自噬清除。
自噬过程可分为五个主要步骤:(1)起始,(2)成核,(3)延伸,(4)货物封存和完成,以及(5)溶酶体融合。启动时,自噬体形成始于 ULK1 复合物(由 ULK1 和 ULK2、ATG13、ATG101 和 FIP200 组成),然后通过磷酸化 PI3K-Beclin1 复合物(由 III 类 PI3K、 VPS34、p115、Beclin-1、ATG14 和 AMBRA1)。ATG12-ATG5-ATG16L1 复合物随后在吞噬细胞伸长中发挥作用。接下来,ATG8(包括 LC3)经过 ATG4、ATG3、ATG7 和 ATG5 复合物的修饰,导致与磷脂酰乙醇胺共价连接,形成 LC3-II。LC3 通常用作自噬体的标记物,其功能是塑造不断生长的吞噬细胞 并参与货物招募 。然后,不断生长的吞噬泡包围内容物,形成完整的自噬体,然后与溶酶体(一种含有降解酶的低 pH 细胞器)融合。自噬可以针对特定的细胞器,就线粒体而言,被称为线粒体自噬。
有多种线粒体自噬途径参与一系列生理和病理环境——无论是由于线粒体损伤而去除线粒体,还是在特殊细胞或组织的发育过程中。这些线粒体自噬途径可大致分为两类:泛素依赖性和泛素非依赖性。最典型的线粒体自噬形式是由 PINK1 和 Parkin 控制的。Parkin 是一种 E3 连接酶,当 PINK1 在线粒体外膜 (OMM) 上稳定后,它会转位至受损的线粒体 。在那里,Parkin 泛素化 OMM 蛋白,从而标记受损的线粒体,供自噬体封装,然后输送至溶酶体。PINK1 和 Parkin 在早发性帕金森病 (PD) 中均发生突变 ,凸显了线粒体质量控制在神经元健康中的重要性。
与细菌起源一致,线粒体含有许多分子,如果线粒体损伤时释放这些分子,这些分子可以充当促炎性 DAMP。一个例子是线粒体 DNA (mtDNA),它激活 DNA 传感器 cGAS,然后启动 STING 信号级联反应。大量研究表明,错误定位的 mtDNA 可能与多种免疫相关疾病有关,包括系统性红斑狼疮、脓毒症、肝衰竭、艾滋病毒、心肌梗死、中风、癌症和类风湿性关节炎,以及无细胞循环增加据报道,PD 患者的 mtDNA 携带PINK1或PRKN突变,进一步表明线粒体自噬对多种炎症病理的重要性。
最近有报道称,线粒体 DAMP 释放(包括 mtDNA 释放)发生在细胞凋亡过程中,但尽管如此,细胞凋亡却以免疫沉默的方式发生。在这种形式的程序性细胞死亡中,促死亡蛋白 BAX 和 BAK 使 OMM 通透,从而释放细胞色素 - c,然后激活凋亡 caspase 级联 。然后 BAX 和 BAK 进一步寡聚,在 OMM 中形成弧形和大孔,线粒体内膜 (IMM) 通过弧形和大孔突出到细胞质中 并变得可渗透,从而释放 mtDNA 等基质成分 。如果 caspase 级联被激活,凋亡细胞的快速破坏会阻止响应细胞质 mtDNA 产生细胞因子,然而,凋亡 caspase 的遗传或药理学抑制会触发 mtDNA 诱导的 DAMP 信号传导。目前尚不清楚线粒体质量控制机制是否参与这两种情况,如果是的话,这些途径是如何启动和调节的。
此论文研究发现,在内源性细胞凋亡过程中,突出的线粒体被自噬体隔离,并被输送到低 pH 环境(可能是溶酶体)进行降解。该过程的发生不依赖于最具代表性的线粒体自噬调节剂 PINK1 和 Parkin,但依赖于 IMM 的泛素化。如果没有 IMM 泛素化,突出的线粒体向溶酶体的传递就会受到损害,这表明 IMM 诱导的线粒体自噬对于去除受损的线粒体和潜在的 DAMP 可能很重要,因为凋亡 caspase 功能或经典线粒体自噬机制已受到损害。
02相关过程图片
图 1:线粒体自噬发生在细胞凋亡过程中
图 2:细胞凋亡过程中线粒体自噬的发生独立于 PINK1/Parkin 线粒体自噬和 STING 诱导的自噬。
图 3:细胞凋亡过程中的线粒体自噬利用了典型的自噬体形成机制。
图 4:自噬衔接蛋白 P62、OPTN 和 NDP52 被募集到突出的线粒体中。
图 5:突出的线粒体内膜被泛素化,并作为吞噬自噬体形成的位点。
图 6:线粒体内膜的泛素对于细胞凋亡线粒体自噬至关重要。
03结果
突出的线粒体是细胞凋亡过程中降解的目标。为了检查内在细胞凋亡过程中是否发生线粒体自噬反应,研究者们利用了BH3模拟物ABT-737处理的Mcl1?/?小鼠胚胎成纤维细胞(MEF),ABT-737会诱导这些细胞中快速发生的BAX/BAK依赖性死亡。实验分别在存在或不存在泛半胱天冬酶抑制剂QVD-OPh的情况下进行(图1A)。
首先,在处理后的4小时和8小时内,通过免疫印迹分析细胞裂解物。研究者观察到,单独使用ABT-737或与QVD-OPh组合使用时,LC3B的脂质化明显增加,表现为较低的LC3-II条带(图1B)。在Bax?/?Bak?/?Mcl1?/?MEF中,这种增加现象不存在,但这些细胞对于FCCP诱导的线粒体自噬反应正常,表现出明显的LC3B脂质化(图S1A、B)。
然后,研究者通过对Mcl1?/?MEF表达GFP标记的LC3B、TOMM20-Halo和TFAM-mScarlet进行活细胞成像,检查LC3B的聚集情况。载体处理的细胞(即DMSO)表现出弥散的细胞质GFP-LC3B信号(图1C),而ABT-737/QVD-OPh处理导致GFP-LC3B斑点形成显著增加(图1C、D)。在这些GFP-LC3B斑点中,大多数与线粒体相关(图1E)。处理后,与线粒体无关的GFP-LC3B斑点有小幅但不显著的增加(图1F)。处理后4小时,细胞显示出与GFP-LC3B相关的线粒体比例约为10%,其中一些细胞显示出高达40%的与LC3B斑点相关的线粒体体积(图1G)。
接下来,研究者利用转盘显微镜检查了这些事件的动力学(电影1)。第一个与线粒体相关的LC3B点在疝出后约20分钟出现。约15分钟后,形成完全包裹突出线粒体的透明GFP-LC3B囊泡(图S1C)。为了更高通量地进一步监测线粒体突出过程中的线粒体自噬,研究者生成了表达线粒体靶向mtKeima的细胞,mtKeima是一种根据环境pH值在不同激发波长下发出荧光的蛋白质,其荧光强度取决于其环境pH值。在溶酶体的低pH环境中荧光是可区分的[17](图1H)。与研究者们的LC3B数据一致,用ABT-737处理Mcl1?/?mtKeima MEF,无论有无QVD-OPh,都会诱导线粒体递送至低pH环境(图1I)。这种反应依赖于BAX和BAK,因为在Bax?/?Bak?/?Mcl1?/?MEF中mtKeima位移被消除(图S1D、E),并且并不表明线粒体自噬能力丧失,因为Bax?/?Bak?/?Mcl1?/?MEF在DFP处理后仍能启动线粒体自噬(图S1F、G)。
综上所述,这些数据表明,在细胞凋亡过程中,突出的线粒体被隔离在溶酶体的低pH环境中。
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